九色国产,午夜在线视频,新黄色网址,九九色综合,天天做夜夜做久久做狠狠,天天躁夜夜躁狠狠躁2021a,久久不卡一区二区三区

一、RNA的提取(詳見RNA提取及反轉(zhuǎn)錄)

不同組織樣本的RNA提取適用不同的提取方法，因為Real-Time PCR對RNA樣品的質(zhì)量要求較高，所以，正式實驗前要選擇一款適合自己樣品的提取方法，在實驗過程中要防止RNA的降解，保持RNA的完整性。

在總RNA的提取過程中，注意避免mRNA的斷裂；取2ug進行RNA的甲醛變性膠電泳檢測，如果存在DNA污染時，要用DNase I進行消化（因為在處理過程中RNA極易降解，建議體系中加入適量RNA酶抑制劑）。

二、DNase I 消化樣品RNA 中的DNA

三、RNA瓊脂糖凝膠電泳

1．1%的瓊脂糖凝膠電泳凝膠的配制：

1） 稱取瓊脂糖0.45g放入三角瓶中，向其中加入4.5ml的10×MOPS緩沖液和39.5ml的DEPC水，放微波爐里溶化。

2） 待冷卻到60攝氏度左右時，加入1ml甲醛，搖勻（避免產(chǎn)生氣泡）。倒入凝膠板上凝固30min。

2．取各個RNA樣品4μl，加入6×RNA電泳上樣緩沖液2μl混勻，加入變性膠加樣孔中。

3．120V電壓下電泳25min。用凝膠紫外分析儀觀察，照相保存。

4．RNA電泳結(jié)果如下圖所示?？梢?/span>28S和18S兩條明亮條帶，無DNA條帶污染。

四．RNA反轉(zhuǎn)錄為cDNA

反轉(zhuǎn)錄程序(以MBI的M-MLV為例)    

反轉(zhuǎn)錄引物的選擇與Real-Time PCR引物設(shè)計的要求：

1）隨機六聚體引物：

當(dāng)特定mRNA由于含有使反轉(zhuǎn)錄酶終止的序列而難以拷貝其全長序列時，可采用隨機六聚體引物這一不特異的引物來拷貝全長mRNA。用此種方法時，體系中所有RNA分子全部充當(dāng)了cDNA第一鏈模板，PCR引物在擴增過程中賦予所需要的特異性。通常用此引物合成的cDNA中96%來源于rRNA。

2）Oligo(dT)：

是一種僅對mRNA特異的方法。因絕大多數(shù)真核細胞mRNA具有3'端Poly(A+)尾，此引物與其配對，僅mRNA可被轉(zhuǎn)錄。由于Poly(A+)RNA只占總RNA的1-4%，故此種引物合成的cDNA比隨機六聚體作為引物和得到的cDNA在數(shù)量和復(fù)雜性方面均要小。特別適合檢測多個基因的表達，這樣可以節(jié)約反轉(zhuǎn)錄的試劑，cDNA可以多次使用，可用于檢測稀有基因是否表達、從極少量細胞中定量檢測特定mRNA的表達水平。

3）特異性引物：

最特異的反轉(zhuǎn)錄方法是用含目標(biāo)RNA的互補序列的寡核苷酸作為引物，若PCR反應(yīng)用二種特異性引物，第一條鏈的合成可由與mRNA3’端最靠近的配對引物起始。用此類引物僅產(chǎn)生所需要的cDNA，導(dǎo)致更為特異的PCR擴增。

做 Real Time PCR時，用于SYBR Green I/Eva Green 法時的一對引物與一般PCR的引物，在引物設(shè)計上所要求的參數(shù)是不同的。引物設(shè)計的要求： 

① Tm=55-65℃

② GC=30-80% 

③ PCR擴增產(chǎn)物長度：引物的產(chǎn)物大小不要太大，一般在80-300bp之間都可。 

④ 引物的退火溫度要高，一般要在 60℃以上。

要特別注意避免引物二聚體和非特異性擴增的存在。而且引物設(shè)計時應(yīng)該考慮到引物要有不受基因組DNA污染影響的能力，即引物應(yīng)該跨外顯子，最好是引物能跨外顯子的接頭區(qū)，這樣可以更有效的不受基因組DNA污染的影響。

至于設(shè)計軟件，PRIMER3，PRIMER5，PRIMER EXPRESS都應(yīng)該可以的。做染料法最關(guān)鍵的就是尋找到合適的引物和做污染的預(yù)防工作。對于引物，你要有從一大堆引物中挑出一兩個能用的引物的思想準備---尋找合適的引物非常不易。

五、cDNA與引物質(zhì)量檢測

取0.2ml薄壁PCR管，編號。向各管中加入含染料2×PCR TaqMix10ul；加入正反向引物各0.5ul（引物濃度10uM） ，向管中加入混合的cDNA各1ul。各管補加水至20ul。

混勻，置于TP600PCR儀中。95℃ 5min；95℃15s，60℃35s ，40cycles；72℃ 5min；4℃ pause。

取擴增產(chǎn)物各8μl，DL2000 分子量標(biāo)準5μl/泳道。1%瓊脂糖凝膠120V電壓下電泳25min。用凝膠紫外分析儀觀察。 

選擇特異性好，擴增效率高的引物作為實時熒光使用引物。

六、利用相對定量的方法分析目的基因表達量的情況：

由于RNA純化后得率不同、RNA反轉(zhuǎn)錄為cDNA的效率不同等客觀因素，用于定量分析的初始樣品濃度不同，因此，在進行基因表達調(diào)控研究中都會用一些看家基因來標(biāo)準化，以校正因樣品初始濃度不同而造成的差異。常用的看家基因有beta-actin，GAPDH，18SrRNA等。因此，在做基因表達調(diào)控分析時至少要做兩個基因，目的基因和一個看家基因。

七、定量 PCR檢測：

取0.2ml薄壁PCR管，分別編號。向各管中加入2×qPCR TaqMix12.5ul，10uM各基因正反向引物混合物0.5ul，對應(yīng)的cDNA各1ul。一管中不加模板用作陰性對照。各管補加水至25ul。

混勻，置于SLAN熒光定量PCR儀中。95℃5min預(yù)變性后，95℃15s→65℃35s（熒光檢測），40cycles。熒光定量PCR一般把退火和擴增設(shè)成一個溫度，只在擴增出現(xiàn)問題時才會考慮設(shè)梯度。

八、擴增曲線和溶解曲線 

溶解曲線全部為單峰表明為特異性擴增。

一般而言，熒光擴增曲線可以分成三個階段：熒光背景信號階段，熒光信號指數(shù)擴增階段和平臺期，其形狀是一條平滑的S型曲線。

如果在熒光背景信號階段出現(xiàn)很多拐點，可能的原因是體系未混勻或者存在固態(tài)雜質(zhì)；如果向下探頭后又很快抬頭然后又向下探頭，可能原因是體系中模板量太高，建議模板稀釋后再用。如果引物二聚體存在則陰性對照會出現(xiàn)抬頭現(xiàn)象，這在Real-Time PCR中很難避免；
若是陰性對照的溶解曲線出現(xiàn)和樣品中同樣的峰，說明體系配置中存在污染，則實驗結(jié)果不可用。

在溶解曲線中出現(xiàn)雙峰有三種可能：

① 引物峰，引物峰通常是兩峰中的前面一個，消除的辦法是降低體系中的引物量或重新設(shè)計引物；

② 在做基因表達差異時容易出現(xiàn)DNA被擴增峰（只在引物跨內(nèi)含子時存在），出現(xiàn)原因是提取RNA時存在DNA污染，可以通過電泳驗證，這時要重新消化RNA樣品中的DNA；

③ 擴增非特異，這時要重新摸擴增條件或重新設(shè)計并驗證引物。

九、表達差異的計算方法

絕對定量通過標(biāo)準曲線計算起始模板的拷貝數(shù)；相對定量方法則是比較經(jīng)過處理的樣品和未經(jīng)處理的樣品目標(biāo)轉(zhuǎn)錄本或是目標(biāo)轉(zhuǎn)錄本在不同時相的表達差異之間的表達差異。

 2-△△CT方法是實時定量PCR實驗中分析基因表達相對變化的一種簡便方法。

在有些情況下，并不需要對轉(zhuǎn)錄本進行絕對定量，只需要給出相對基因表達差異即可。顯然，我們說X基因在經(jīng)過某種處理后表達量增加2.5倍比說該基因的表達從1000 拷貝/細胞增加到2500拷貝/細胞更加直觀。

2-△△CT方法的推導(dǎo)（詳見實時定量PCR和2-△△CT法分析基因相對表達量） 

補充：在DNase I 消化樣品RNA 中的DNA后，需要對樣品重新進行氯仿抽提，具體實驗流程如下：

消化后總體積10Oul，體積太少，不利于抽提，我們往往補加200ulDEPC水。

1.  向離心管中加入等體積氯仿（約300ul） ，劇烈顛倒，充分混勻至中層出現(xiàn)白色片狀沉淀。4℃14000 rpm離心8min，取上清（約250ul）。

2. 加入1/10體積的NaAC（3M）（約25ul）和預(yù)冷的等體積異丙醇（約280ul），-20℃放置20min。

3. 4℃14000 rpm離心15min，去上清，注意不要觸到沉淀。 

4.  加入1ml的75%乙醇，4℃14000rpm離心3min，去上清。

5.  瞬時離心，用200ul（或10ul）的槍頭小心吸去離心管底的殘存液態(tài)（勿吸到管底的沉淀）。 

6. 把離心管放置于超凈臺晾至約5-10 分鐘（勿完全干燥，否則很難溶）。加入30~50μl的無RNase的水，靜止1min 后，振蕩30sec，瞬時離心。

7. 將提取的RNA立即進行下游實驗，或放-20℃保存。